Spośród wymienionych powyżej rodzajów osocza najcenniejszym i najskuteczniejszym produktem terapeutycznym jest osocze świeżo mrożone (FFP). Wysokie właściwości lecznicze FFP wynikają z zachowania w nim wszystkich białkowych czynników krzepnięcia, w tym labilnych, przez 12 miesięcy przechowywania w temperaturze 30-40°C.
Podczas rozmrażania FFP zaleca się użycie dodatkowej (drugiej) torby plastikowej, aby zapewnić szczelność w kąpieli wodnej.
Rozmrożone osocze (o temperaturze wody 37–38°C) nie powinno zawierać zmętnienia, płatków fibryny ani skrzepów (jeśli występuje, osocze nie nadaje się do transfuzji). W praktyce transfuzyjnej należy stosować osocze dawcy zgodne z antygenami ABO i czynnikiem Rh biorcy. Jednakże w nagłych przypadkach dopuszczalne jest stosowanie małych objętości osocza grupy A(P) i B(P1) u pacjentów z grupy 0(1) oraz osocza grupy AB(IV) u pacjentów dowolnej grupy.
Rozmrożonego osocza nie można przechowywać i należy zużyć nie później niż 1-2 godziny po rozmrożeniu, aby uniknąć utraty aktywności czynników krzepnięcia. Podczas transfuzji FFP mogą wystąpić reakcje pokrzywkowe lub alergiczne, a także reakcje typu anafilaktycznego, choć rzadkie. W związku z tym pacjenci uczuleni na białko podawane pozajelitowo nie powinni być poddawani transfuzji osocza. Uzasadniając wskazania do stosowania przetoczeń różnych rodzajów osocza, w tym FFP, należy mieć na uwadze podstawowe stanowisko, że niektóre białkowe czynniki krzepnięcia w osoczu są stabilne (fibrynogen – czynnik I, protrombina – czynnik I, Christmas – czynnik IX, czynniki XI, XII i XIII), a druga część jest labilna (proakceleryna – czynnik V, prokonwertyna – czynnik VII, antyhemofil – czynnik VIII).
Labilne czynniki V, VII i VIII szybko (12-24 godzin) tracą swoją aktywność w przechowywanej pełnej krwi konserwowej lub w wyizolowanym z niej osoczu. Jednocześnie w świeżo mrożonym osoczu aktywność tych czynników pozostaje w pełni niezmieniona przez 12 miesięcy lub dłużej. Aktywność czynników stabilnych (I, II, IX, X, XI, XII, XIII) utrzymuje się dłużej w krwi pełnej, a także w osoczu natywnym i mrożonym. Ta ważna uwaga dotycząca zachowania czynników krzepnięcia powinna służyć jako uzasadnienie stosowania osocza natywnego lub świeżo mrożonego w tej czy innej postaci koagulopatii (patrz rozdział XII).
LITERATURA

1. Agranenko V.A. Produkty krwiopochodne i substytuty krwi. - M.: 1956. - 163 s.
2. Agranenko V.A., Melkikyan N.A. Kriokonserwacja czerwonych krwinek odzyskanych po długim okresie przechowywania // Probl. hematol. i przelew, krew. 1977. - nr 5. s. 45-50.
3. Agranenko V.A., Golubeva V.L. Cytroglukofosforan jest skutecznym roztworem konserwującym krew // Sov. Miód. - 1979. - nr 9. - s. 19-22.
4. Agranenko V.A. i inne.. Konserwacja erytrokoncentratu zubożonego w leukocyty i płytki krwi (sposoby wytwarzania i zalety transfuzjologiczne) // Probl. hematol. i przelew, krew. - 1980. - nr 9. - s. 15-19.

1. Agranenko V.A., Lisovskaya I.L., Company, A.U. Przydatność funkcjonalna płytek krwi w krwi konserwowej w okresie 1-7 dni przechowywania // Probl. hematol. i przelew, krew. - 1981. - nr 2. - s. 36-41.
2. Agranenko V.A. i inne.W zagadnieniu właściwości funkcjonalnych granulocytów otrzymywanych metodą cytaferezy automatycznej //Probl. hematol. i przelew, krew. - 1981. - nr 3. - s. 18-20.
3. Agranenko V.A., Fedorova L.I. Zamrożona krew i jej zastosowania kliniczne. - M.: Medycyna, 1983. - 120 s.
4. Agranenko V.A., Markova N.A. i inne.Przywracanie przydatności krwi konserwowej po długotrwałym przechowywaniu //Hematol. i transfusiol. - 1983. - nr 10. - s. 53-54.
5. Agranenko V.A., Fedorova L.I. Kriokonserwacja erytrocytów // Kriokonserwacja zawiesin komórkowych. - Kijów: Naukova Dumka, 1983. - s. 79~97.
6. Agranenko V.A., Ermalovich S.V. Kriokonserwacja leukocytów // Tamże. - s. 98-106.
7. Agranenko V.A., Kompaniets A.M. Kriokonserwacja płytek krwi // Tamże. - s. 107-116.
8. Agranenko V.A. i inne Metody izolacji koncentratów płytek krwi i leukocytów z warstwy leukocytarnej krwi konserwowanej Hematol. i transfusiol. - 1985. - nr 11. - s. 54-59.
9. Agranenko V.A., Suvorova I.A. i inne Nowy roztwór konserwujący do krwi z adeniną, nikotynamidem i fosforanami // Hematol. i transfusiol. - 1985. - nr 2. - s. 12-18.
10. Agranenko V.A., Azovskaya S.A. i inne Terapeutyczna skuteczność transfuzji przywróconych („odmłodzonych”) erytrocytów w stanach anemicznych // Hematol. i transfusiol. - 1986. - nr 10.-S. 3-7.
11. Agranenko V.A. i inne Kriokonserwacja granulocytów roztworem „leukokriomat” // Tamże. - 1986. - nr 12. - s. 26-28.
12. Agranenko V.A., Sukhanov Yu.S. Konserwacja i kriokonserwacja krwinek – osiągnięcia i perspektywy // Tamże. - 1987. - nr 10. - s. 10-14.
13. Agranenko V.A., Suvorova I.A. i inne.Przydatność morfofunkcjonalna krwi i koncentratów erytrocytów zakonserwowanych w pojemnikach polimerowych i butelkach szklanych // Tamże. - 1987. - nr 7. - s. 28-32.
14. Agranenko V.A. i inne Izolacja koncentratów płytek krwi z warstwy leukopłytek krwi dawcy i ich konserwacja // Tamże. - 1991. - nr 3. - s. 29-32.
15. Almazov V.A. i inne Fizjologia leukocytów ludzkich. - L.: Nauka, 1979. - 232 s.
16. Vorobyov A.I., Gorodetsky V.M., Kryuchkov M.I. Pozyskiwanie masy płytek krwi i jej zastosowanie w leczeniu białaczki // Plazmafereza i chirurgia grawitacyjna. - Erywań, 1991. - s. 94-98.
17. Gavrilov O.K., Rusanov V.M. Produkty krwiopochodne i ich zastosowanie kliniczne // Poradnik transfuzji krwi i substytutów krwi. - M.: Medycyna, 1982. - s. 76-92.
18. Gavrilov O.K., Rusanov V.M. Produkty krwiopochodne // Przewodnik po transfuzjologii ogólnej i klinicznej. - M.: Medycyna, 1979. - s. 176-189.
19. Gorodecki V.M. Pobieranie płytek krwi od jednego dawcy metodą trombocytaferezy przerywanej i ich zastosowanie w małopłytkowości amegakaryocytowej: Streszczenie pracy dyplomowej. dis. Doktorat Miód. Nauka. - M., 1981. - 32 s.
20. Gorodetsky V.M., Vorobiev A.I. Otrzymanie terapeutycznej dawki płytek krwi od jednego dawcy // Grawitacyjna chirurgia krwi. - M., 1983. - s. 153-154.
21. Grozdov D.M. Naturalne substytuty krwi // Transfuzja krwi. - M.: Medycyna, 1951. - s. 257-287.
22. Guseinov Ch.S. Fizjologia i patologia płytek krwi. - M.: Medycyna, 1971. s. 126-156.
23. Zabelina T. S. Zdolność komórek krwiotwórczych do tworzenia kolonii u chorych na przewlekłą białaczkę szpikową: Streszczenie pracy dyplomowej. dis. Doktorat Miód. Nauka. - L., 1979. - 128 s.
24. Kalinin N.N. Plazmocytafereza na frakcjonatorach krwi (zasady i metody realizacji, wpływ na organizm): Streszczenie pracy dyplomowej. dis. doktor. Miód. Nauka. - M., 1984. - 32 s.
25. Kartashevsky N.G. i inne Kliniczne znaczenie mikroskrzepów przetoczonej krwi // Chirurgia. - 1974. - nr 12. - s. 56-60.
26. Kompaniets A.M. Konserwacja koncentratów płytek krwi i ich skuteczność terapeutyczna: Streszczenie pracy dyplomowej. dis. doktor. Miód. Nauka. - M., 1992. - 42 s.

3-5515

1. Leontovich V.A., Abezgauz N.N. Zamrażanie białych krwinek obwodowych w celu długotrwałego przechowywania // Probl. hematol. i przelew, krew. - 1966. - nr 9. - s. 24-30.
2. Leontovich V.A., Abezgauz N.N., Troshina V.M. Metoda zamrażania granulocytów dimetyloacetamidem // Sovrem. problem kriobiol. i zamrożony. - M., 1975. - s. 75-84.
3. Pushkar N.S., Belous A.M. Aktualne problemy kriobiologii. - Kijów: Naukova Dumka, 1981. - 584 s.
4. Svedentsov E.P. Nowoczesne metody otrzymywania koncentratu płytek krwi do celów klinicznych // Transfuz. Miód. Petersburg. - 1995. - nr 5. - s. 27-28.
5. Tibilova N.N., Agranenko V.A. i inne Wpływ temperatury pokojowej na bezpieczeństwo krwi w puszkach // Hematol. i transfusiol. - 1988. - nr 5. - s. 21-25.
6. Filatow A.N. Przygotowanie i transfuzja osocza i surowicy // Przewodnik po transfuzji krwi i substytutach krwi. - L.: Medycyna, 1973. - s. 205-220.
7. Goldman U, Lowenthal F. (er.) Leukocyty: separacja, pobieranie i transfuzja // Acad. Press., 1975. - 602 s.
8. Chaplin Y. Retrospektywa redakcyjna, mrożone krwinki czerwone // New Engl. J. Med. - 1984. - nr 311. - s. 1696-1698.
9. Calhoun L. Przygotowanie i podawanie produktów krwiopochodnych. Rozdz. 13, s. 305-333 // Petz L. i in. (red.) / Praktyka kliniczna medycyny transfuzyjnej. - Nowy Jork: Churchill Leuingstone, 1996.
10. Huestis Zgt;., Bove /., Bush Sh. (red.) Praktyczna transfuzja krwi // Little, Brown Company, 1981. - 470 s.
11. Mollison P., Engelfriet C, Contreras M. Transfuzja krwi w medycynie klinicznej. - 9. wydanie. - Oksford, 1993. - 1015 s.
12. Rasz Z, Thek M. Kożuszek leukocytarny osocza bogatopłytkowego. Porównanie dwóch technik obróbki płytek krwi //Vox Sang. - 1984. - nr 47. - s. 108-113.
13. Instrukcja techniczna // Amer. Tyłek. banków krwi. - 10. edycja. Arlington. - 1990. - 665 s.
14. Valeri C. Bankowanie krwi i wykorzystanie mrożonych produktów z krwi // CRC Press, 1976. - 417 s.

Świeżo mrożone osocze (FFP) należy do grupy korektorów hemostazy krzepnięcia. Zawiera albuminę, czynniki krzepnięcia, fibrynolizę, dopełniacz, immunoglobuliny, inhibitory proteaz.

Główny cel aplikacji FFP – uzupełnia niedobory czynników krzepnięcia krwi. Jedynym wskazaniem do przetoczenia FFP uznanym przez Amerykańskie i Europejskie Towarzystwo Medycyny Transfuzyjnej jest obecność klinicznie istotnego niedoboru czynników krzepnięcia.

Zgodnie z powyższym zamówieniem Wskazaniami do przetoczenia FFP są:

Ostra masywna utrata krwi (ponad 30% objętości krwi) z rozwojem wstrząsu krwotocznego i zespołu rozsianego krzepnięcia wewnątrznaczyniowego;

Spadek stężenia fibrynogenu do 0,8 g/l;

Spadek wskaźnika protrombiny poniżej 60%;

Wydłużenie TV lub APTT ponad 1,8 razy w stosunku do kontroli.

Dawkę FFP ustala się w zależności od ciężkości tych zaburzeń. Pojedyncza dawka wynosi zwykle 10-20 ml/kg.

Koncentrat płytek krwi

Koncentrat płytkowy (TC) to zawiesina żywych i hemostatycznie aktywnych płytek krwi w osoczu.

Główny cel aplikacji TK – w celu zapobiegania możliwym zaburzeniom krzepnięcia krwi w przypadku ciężkiej, a zwłaszcza bardzo ciężkiej utraty krwi.

Wskazania Przepisać TC oznacza zmniejszenie liczby płytek krwi poniżej 50 × 10 9 / l lub zmniejszenie indukowanej agregacji płytek krwi do połowy normy.

Konwencjonalną jednostką miary TC jest 1 dawka przygotowana z 500 ml zakonserwowanej krwi. Zawiera 55 miliardów płytek krwi w 50-70 ml osocza. Zazwyczaj przepisuje się 1 dawkę CT na 10 kg masy ciała pacjenta.

Notatka. TC ma krótki termin przydatności do spożycia (3-5 dni), dlatego w większości przypadków służby transfuzji krwi nie mają go na stanie na służbie.

Roztwór albuminy

Główną fizjologiczną rolą albumin, których stężenie w osoczu waha się od 35 do 50 g/l, jest utrzymanie ciśnienia onkotycznego osocza i zapewnienie funkcji transportowej krwi (V. Gorodetsky, 2003).

Roztwór albuminy ludzkiej jest preparatem plazmowym. Albumina zapewnia 80% koloido-onkotycznego (ChZT) ciśnienia osocza równego 28 mm Hg.

Głównym celem stosowania roztworu albuminy ludzkiej jest normalizują koloidowo-onkotyczne ciśnienie krwi.

Wskazania do transfuzji roztworu albuminy to zmniejszenie całkowitego białka o mniej niż 52 g/l i zmniejszenie zawartości albuminy o mniej niż 27 g/l.

W celu uzupełnienia niedoborów albumin spowodowanych ostrą utratą krwi najbardziej wskazane jest zastosowanie 5% roztworu. Pojedyncza dawka to 200-400 ml.

Substytuty plazmy

DO ekspandery plazmowe Należą do nich syntetyczne roztwory substytucyjne koloidalne i krystaloidalne: roztwory żelatyny, dekstrany, roztwory hydroksyetyloskrobi (HES), roztwory glikolu polietylenowego, roztwory soli i roztwory cukru.

Głównym celem stosowania ekspanderów plazmowych w przypadku ostrej utraty krwi – w celu uzupełnienia niedoboru objętości krwi.

Właściwości farmakologiczne ekspanderów osocza przedstawiono w tabeli. 18-3. Jednym z najważniejszych wskaźników ekspanderów plazmy jest efekt wolemiczny – stosunek przyrostu bcc do objętości wstrzykniętego koloidu. Efekt wolemiczny większy niż 100% wskazuje na przejście płynu z tkanki śródmiąższowej do łożyska naczyniowego, mniej niż 100% wskazuje na proces odwrotny.

Mechanizm działania wszelkich koloidów, bez uwzględnienia ich specyficznych właściwości, jest następujący: właściwości reologiczne krwi poprawiają się w wyniku hemodylucji, w wyniku zmniejszenia jej lepkości względnej, wzrostu COP i dezagregacji erytrocytów. Każde 500 ml koloidów podane dożylnie w ciągu 15 minut powoduje obniżenie hematokrytu o 4-6%. Przy hemodylucyjnym obniżeniu hematokrytu o mniej niż 28% może rozwinąć się koagulopatia hemodylucyjna (Baryshev B.A., 2003).

Roztwory żelatyny.Żelatyna jest rozpuszczalną w wodzie substancją pochodzenia zwierzęcego o dużej masie cząsteczkowej. W porównaniu do innych białek nie posiada swoistości, co pozwala na wykorzystanie go jako substytutu krwi.

Preparaty na bazie żelatyny obejmują Żelatynol, Modelel, Gelofusin(modyfikowana (sukcynylowana) żelatyna). W ujęciu porównawczym pierwsze dwa leki mają niższy efekt wolemiczny (Żelatynol 60%, Modelel 40-60%), dlatego coraz częściej stosuje się je jako środki zastępujące osocze przy krwotokach, wstrząsach chirurgicznych i pourazowych I i II stopnia oraz do napełniania maszyn do sztucznego krążenia.

Żelofuzyna[modyfikowana (sukcynylowana) żelatyna] nie działa hamująco na pierwotną i wtórną hemostazę, ma 100% efekt wolemiczny z czasem trwania efektu wolemicznego 3-4 h. Maksymalna dozwolona dzienna dawka tego leku wynosi do 200 ml /kg/24h, co pozwala na jego zastosowanie przy masywnych krwawieniach w objętości do 10-15 litrów na dobę, a to ostatecznie prowadzi do znacznego wzrostu BCC i CO.

Gelofusin obniża lepkość krwi, poprawia to mikrokrążenie i funkcję transportu tlenu we krwi (należy zadbać o to, aby Ht nie spadło poniżej 25%, a u osób starszych poniżej 30%). Dzięki ciśnieniu koloidowo-onkotycznemu gelofusyny wynoszącemu 33,3 mm Hg jej zastosowanie ogranicza rozwój obrzęków śródmiąższowych, nie kumuluje się w tkankach i ma wyraźne działanie detoksykacyjne.

Gelofusin jest wydalany w 95% przez nerki i 5% przez jelita, nie wpływa negatywnie na pierwotną i wtórną hemostazę i może być stosowany w niewydolności nerek.

Tabela 18 -3. Właściwości farmakologiczne substytutów krwi na bazie żelatyny, dekstranu, hydroksyetyloskrobi i glikolu polietylenowego (cyt. za B.A. Baryshev, 2001)

Koniec stołu. 18-3

Notatka.

* - masa cząsteczkowa, kilodalton;

** - masa cząsteczkowa, kilodalton/stopień podstawienia.

Żelofuzyna ma podwójną korzyść ekonomiczną i podobny wpływ na parametry hemodynamiczne w porównaniu z roztworami hydroksyetyloskrobi (HES). Poprawia mikrokrążenie tkankowe skuteczniej niż preparaty HES.

Notatka. 1. Przy podawaniu 2000-3000 ml gelofusyny należy monitorować stężenie białek we krwi. Gdy spadnie poniżej 52 g/l, konieczna jest korekta roztworami albumin.

Roztwory dekstranu. Są to substytuty osocza (sztuczne koloidy) składające się z polimerów glukozy. Znane są dekstrany o średniej masie cząsteczkowej 60 000-70 000 Da (poliglucyna, Polyfer) i o niskiej masie cząsteczkowej 40 000 Da (reopoliglucyna, reogluman, reomakrodex). Dekstrany średniocząsteczkowe normalizują głównie parametry makrokrążenia, natomiast dekstrany niskocząsteczkowe normalizują mikrokrążenie.

Notatki

Polifer- roztwór 6% poliglucyny + 0,015 - 0,020% związanego żelaza.

Reoglumana- roztwór 10% reopoliglucyny + 5% roztwór mannitolu i 0,9% roztwór chlorku sodu.

Średniocząsteczkowe dekstrany(poliglucyna, polimer, zagraniczne analogi: makrodex, intradex i inne) są optymalnymi substytutami osocza w leczeniu ostrej utraty krwi. Mają 120% efektu wolemicznego i czas działania 4-6 h. Dzięki dużej masie cząsteczkowej (60 000-70 000 Da) i wysokiemu ciśnieniu koloidowo-osmotycznemu (COP) poliglucyna w łożysku naczyniowym przyciąga wodę i tworzy trwały i długotrwały wzrost BCC.

Ze względu na wyraźny efekt wolemiczny poliglucyna skutecznie zwiększa BCC, BP, SV i CO. Lek poprawia właściwości reologiczne krwi i mikrokrążenie.

Dopuszczalna bezpieczna maksymalna dawka poliglucyny wynosi 20 ml/kg/24 godziny, dziennie – 1500 ml. Przekroczenie tej dawki może spowodować zespół dekstranowy (uszkodzenie płuc, nerek, hipokoagulacja), wystąpienie przewodnienia śródmiąższowego. Czas trwania efektu klinicznego wynosi 4-6 h. Poliglucyna jest wydalana z organizmu głównie przez nerki.

Stosując poliglucynę należy zawsze pamiętać o jej działaniu wolemicznym (120%). Przy szybkim dożylnym podaniu poliglucyny istnieje możliwość przeciążenia układu naczyniowego na skutek osmotycznego działania leku i wymuszonego przyciągania płynu z przestrzeni śródmiąższowej do łożyska naczyniowego, dlatego stosowanie tego dekstranu należy łączyć z wlewami roztwory krystaloidów.

Roztwory dekstranu zajmują pierwsze miejsce wśród ekspanderów osocza ze względu na hamujący wpływ na pierwotną i wtórną hemostazę, co w efekcie może powodować zaburzenia w układzie krzepnięcia krwi. Podaniu dekstranów mogą towarzyszyć reakcje alergiczne, anafilaktyczne oraz zaburzenia właściwości reologicznych krwi.

Roztwory hydroksyetyloskrobi(HES) to ekspandery osocza (sztuczne koloidy) pochodzące ze skrobi amylopektynowej i składające się ze spolimeryzowanych jednostek glukozy. W zależności od średniej masy cząsteczkowej, która waha się od 200 000 do 450 000 Da, roztwory HES dzieli się na dwie grupy farmakologiczne: pentaskrobię i hetaskrobię.

DO pentaskrobia obejmują roztwory HES o masie cząsteczkowej 200 000 Da i stopniu podstawienia 0,4 (na przykład HES 130/0,4, Voluven), stopień podstawienia 0,5 (np. GEC 200/05, HAES – sterylizowane- 6% i 10%, Hemohes- 6% i 10%, Refortan- 6% i Refortan plus- 10%, Infukol HES- 6% i 10%).

DO hetaskrobi obejmują roztwory HES o masie cząsteczkowej 450 000 Da i stopniu podstawienia 0,6-0,8 (np. HES 450/0,7 stabizol). Roztwory HES 450/0,7 w porównaniu z HES 130/0,4 i HES 200/05 mają zdolność dłuższego zatrzymywania wody w łożysku naczyniowym.

Roztwory HES normalizują zaburzoną hemodynamikę poprzez zwiększenie objętości krwi, ciśnienia krwi, objętości wyrzutowej i CO; Zachodząca na tle ich stosowania hemodylucja poprawia właściwości reologiczne krwi poprzez zmniejszenie Ht, zmniejszenie agregacji płytek krwi, a w efekcie poprawia dostarczanie i zużycie tlenu przez tkanki. Nie wydzielają histaminy, reakcje alergiczne są rzadkie i nie ma ryzyka infekcji.

Roztwory HES działają hamująco na pierwotną i wtórną hemostazę. Czas trwania działania wolemicznego roztworów HES oraz maksymalne bezpieczne dawki dobowe przedstawiono w tabeli. 18-3.

Roztwory soli(izotoniczny roztwór chlorku sodu, mleczan Ringera, laktazol itp.). Pierwszym lekiem stosowanym w leczeniu utraty krwi i odwodnienia był izotoniczny roztwór chlorku sodu. Głównym celem stosowania krystaloidów w leczeniu ostrej utraty krwi jest uzupełnienie deficytu objętości przestrzeni śródmiąższowej, a nie łożyska naczyniowego.

Każde 500 ml izosmolarnych elektrolitów podane dożylnie w ciągu 15 minut powoduje 100% efekt wolemiczny. W ciągu kolejnych 15 minut 80% wody przedostaje się do śródmiąższu, a 20% wody pozostaje w łożysku naczyniowym, tj. efekt wolemiczny zmniejsza się ze 100% do 20% (cyt. za B.A. Baryshev, 2003).

Po 3 godzinach od rozpoczęcia podania roztwór izotoniczny całkowicie opuszcza łożysko naczyniowe. Przy stosowaniu dużych ilości roztworów soli mogą wystąpić negatywne skutki: przewodnienie, obrzęki obwodowe, obrzęk płuc. Podanie dużych ilości roztworu izotonicznego może spowodować powstanie kwasicy hiperchloremicznej i wzmożone wydalanie potasu z organizmu.

Roztwory cukru. Włączenie roztworów glukozy lub innych roztworów cukru (na przykład glukosterylu) do protokołu terapii infuzyjno-transfuzyjnej w przypadku ostrej utraty krwi jest wskazane jedynie w celu zapobiegania i leczenia hipoglikemii.

Wspomaganie objętości wewnątrznaczyniowej roztworami glukozy jest nieskuteczne, a hiperglikemia zwiększa deficyty neurologiczne, sprzyjając niedokrwiennemu uszkodzeniu neuronów. Powstała wolna woda podczas metabolizmu glukozy szybko przechodzi przez sektor śródmiąższowy i przenika do komórek (w tym mózgu), powodując ich dodatkowe nawodnienie.

W sytuacjach krytycznych można zastosować dożylne wstrzyknięcie strumieniowe roztworów cukru w ​​celu krótkotrwałej korekty objętości krwi.

Osocze dostępny:
frakcjonowanie dawki zakonserwowanej krwi przez wirowanie;
na separatorach (afereza automatyczna);
filtracja krwi w puszkach przez specjalne membrany zatrzymujące elementy komórkowe;
poprzez samoistną sedymentację masy krwinek pod wpływem grawitacji (nieskuteczny i praktycznie nie stosowany).

Od jednego standardowa dawka krwi- 450-500 ml otrzymuje 200-250 ml osocza. Istnieją dwa rodzaje osocza: rodzime i świeżo mrożone.

Prawie cała plazma uzyskane z zakonserwowanej krwi w ciągu 6 godzin od pobrania krwi. Powstałą plazmę natychmiast poddaje się głębokiemu zamrażaniu w temperaturze -45°C. W temperaturze -30°C FFP można przechowywać przez okres do jednego roku. Takie warunki pozwalają zachować czynniki V i VIII, a także inne niestabilne czynniki układu krzepnięcia krwi, przy minimalnych stratach.

Natywna plazma, podobnie jak FFP, zawiera cały kompleks stabilnych i labilnych czynników hemostazy, fibrynolizy, układu dopełniacza i propertydin, wielocząsteczkowe kompleksy białkowe zapewniające ciśnienie onkotyczne; przeciwciała i inne czynniki tworzące immunologiczną część krwi.

Wiewiórki osocze mają wysoką immunogenność, co może powodować uczulenie pacjentów, zwłaszcza w wyniku wielokrotnych transfuzji. W trakcie lub bezpośrednio po transfuzji FFP u pacjentów uczulonych na kompleksy białkowe osocza mogą wystąpić powikłania w postaci anafilaktycznych reakcji transfuzyjnych. Pacjenci z niedoborem immunoglobuliny A powinni być pod tym względem objęci szczególną opieką, gdyż są oni w grupie zwiększonego ryzyka predyspozycji do reakcji anafilaktycznych.

W ramach analizy parametrów laboratoryjnych podczas transfuzji FFP nie jest konieczne (Standards of American Pathologists, 1994) pod warunkiem, że:
czas protrombinowy jest przekroczony nie więcej niż 1,5-krotność (> 18 s) średniej wartości prawidłowej;
czas częściowej protrombinowej aktywowanej (APTT) przekraczał nie więcej niż 1,5-krotność górnej granicy normy (> 50-60 s);
Wykrywa się mniej niż 25% aktywności czynników krzepnięcia. Przepisując FFP należy pamiętać, że:
nie określono skuteczności FFP u pacjentów z ciężką chorobą wątroby z aktywnym krwawieniem;

Nie określono roli transfuzji FFP u pacjentów poddawanych operacjom wątroby w okresie pooperacyjnym;
FFP nie może korygować zaburzeń krzepnięcia związanych z ciężką chorobą wątroby;
w celu zatamowania krwawienia u pacjentów z uszkodzeniem wątroby wymagane są duże objętości FFP – co najmniej 5 dawek;
FFP jest nieskuteczny w leczeniu stanów niedoboru odporności;

Jedna dawka FFP w leczeniu dorosłego pacjenta jest w wielu przypadkach nieskuteczna;
Nie należy przepisywać FFP profilaktycznie bez badań laboratoryjnych;
FFP utrzymuje badania krzepnięcia w granicach normy u pacjentów z niedoborami czynników XI, VII, V, białka C, białka S, antytrombiny III (AT-III).

Podczas leczenia zakrzepowego plamica małopłytkowa Zalecana jest wymiana osocza na wymianę FFP.
Hipowolemia nie wymaga transfuzji FFP. W takich przypadkach infuzje koloidalnych substytutów krwi w połączeniu z krystaloidami i (lub) roztworami albumin są bezpieczniejsze, tańsze i bardziej dostępne. W przypadku braku aktywnego krwawienia pacjent nie powinien otrzymywać FFP, jeśli czas protrombinowy nie przekracza górnej granicy normy o więcej niż 3 sekundy.

Liczba patologicznych stwierdza, przy którym stwierdzono skuteczność transfuzji FFP, jest bardzo wysoka. FFP ma dużą skuteczność terapeutyczną w przypadku krwawień i krwotoków spowodowanych niedoborem kompleksu czynników krzepnięcia i koagulopatiami.

W naszym kraju w warunkach niedostatecznej liczby specyfików skoncentrowane składniki osocza, odpowiadających im preparatów farmakologicznych, trudno przecenić znaczenie transfuzji FFP jako skutecznej metody leczenia wielu chorób. Na szczególną uwagę zasługuje następująca okoliczność: większość danych na temat skuteczności FFP uzyskano w czasie, gdy na rynku nie było środków hemostatycznych w postaci leków. Obecnie w większości tych przypadków, w obecności preparatów osocza (białka i specyficznych koncentratów czynników krzepnięcia) oraz substytutów krwi, można ograniczyć stosowanie FFP, a w niektórych przypadkach lepiej jest zrezygnować z transfuzji osocza.

2.1. Badania immunoserologiczne transfuzji nośników gazów we krwi

2.2. Badania immunoserologiczne podczas transfuzji korektorów hemostazy i fibrynolizy, środków korygujących odporność

3. Technika badań immunoserologicznych

3.1. Oznaczanie grupy krwi AB0

Uwzględnianie wyników oznaczania grupy krwi AB0

3.2. Określenie stanu Rh

4. Badania indywidualnej zgodności krwi dawcy i biorcy

4.1. Dwuetapowy test w probówkach z antyglobuliną

4.2. Test kompatybilności na samolocie w temperaturze pokojowej

4.3. Pośredni test Coombsa

4.4. Test zgodności z użyciem 10% żelatyny

4,5. Test zgodności z użyciem 33% poliglucyny

5. Przyczyny błędów przy określaniu grupy krwi, przynależności Rh oraz przeprowadzaniu badań zgodności indywidualnej i działaniach im zapobiegających

5.1. Błędy techniczne

5.2. Trudno określić grupę krwi

6. Próbka biologiczna

7. Transfuzja nośników gazów we krwi

7.1. Wskazania do transfuzji nośników gazów krwi

7.2. Charakterystyka nośników gazów we krwi i cechy ich zastosowania

7.3. Kryteria skuteczności transfuzji nośników gazów we krwi

7.4. Cechy transfuzji nośników gazów we krwi w pediatrii

Dobór składników krwi według systemu AB0 do przetaczania dzieciom do 4. miesiąca życia

7,5. Autodonacja składników krwi i autohemotransfuzja

8. Transfuzja korektorów hemostazy krzepnięcia plazmowego

8.1. Charakterystyka korektorów hemostazy krzepnięcia plazmowego

8.2. Wskazania i przeciwwskazania do przetaczania świeżo mrożonego osocza

8.3. Cechy transfuzji świeżo mrożonego osocza

8.4. Reakcje podczas transfuzji świeżo mrożonego osocza

8,5. Transfuzja krioprecypitatu

9. Przetaczanie koncentratów płytek krwi

9.1. Charakterystyka koncentratu płytek krwi

9.2. Wskazania i przeciwwskazania do przetaczania koncentratu płytek krwi

9.3. Kryteria skuteczności transfuzji koncentratu płytek krwi

9.4. Profilaktyczna transfuzja koncentratu płytek krwi

9,5. Warunki transfuzji koncentratu płytek krwi

10. Transfuzja koncentratu leukocytów

10.1. Charakterystyka koncentratu leukocytów

10.2. Wskazania i przeciwwskazania do przetaczania koncentratu leukocytów

10.3. Cechy transfuzji koncentratu leukocytów

10.4. Kryteria skuteczności transfuzji koncentratu leukocytów

10,5. Profilaktyczne transfuzje koncentratu leukocytów

10.6. Działania niepożądane podczas transfuzji koncentratu leukocytów

11. Powikłania potransfuzyjne

11.1. Natychmiastowe i odległe powikłania po przetoczeniu składników krwi

Powikłania po przetoczeniu składników krwi

11.2. Zespół masywnej transfuzji

8.2. Wskazania i przeciwwskazania do przetaczania świeżo mrożonego osocza

Wskazaniami do przepisania transfuzji świeżo mrożonego osocza są:

Ostre rozsiane wykrzepianie wewnątrznaczyniowe (DIC), powikłane przebiegiem wstrząsów różnego pochodzenia (septycznego, krwotocznego, hemolitycznego) lub wywołanych innymi przyczynami (zatorowość płynu owodniowego, zespół wypadku, ciężkie urazy z zmiażdżeniem tkanki, rozległe operacje chirurgiczne, szczególnie na płucach) , naczynia krwionośne, mózg, mózg, prostata), zespół masywnej transfuzji.

Ostra masywna utrata krwi (ponad 30% objętości krwi krążącej) z rozwojem wstrząsu krwotocznego i zespołu rozsianego krzepnięcia wewnątrznaczyniowego;

Choroby wątroby, którym towarzyszy zmniejszenie produkcji czynników krzepnięcia osocza i odpowiednio ich niedobór w krążeniu (ostre piorunujące zapalenie wątroby, marskość wątroby);

Przedawkowanie pośrednich antykoagulantów (dikumaryna i inne);

Podczas wykonywania terapeutycznej plazmaferezy u pacjentów z zakrzepową plamicą małopłytkową (choroba Moschkowitza), ciężkim zatruciem, posocznicą, ostrym rozsianym zespołem wykrzepiania wewnątrznaczyniowego;

Koagulopatie spowodowane niedoborem fizjologicznych antykoagulantów w osoczu.

Nie zaleca się przetaczania świeżo mrożonego osocza w celu uzupełnienia objętości krwi krążącej (są na to bezpieczniejsze i bardziej ekonomiczne sposoby) lub w celu żywienia pozajelitowego. Należy zachować ostrożność przepisując transfuzje świeżo mrożonego osocza osobom z istotną historią transfuzji lub w przypadku zastoinowej niewydolności serca.

8.3. Cechy transfuzji świeżo mrożonego osocza

Przetaczanie świeżo mrożonego osocza odbywa się za pomocą standardowego systemu do przetaczania krwi z filtrem, w zależności od wskazań klinicznych – w strumieniu lub kroplówce, w ostrym DIC z ciężkim zespołem krwotocznym – w strumieniu. Zabrania się przetaczania świeżo mrożonego osocza kilku pacjentom z tego samego pojemnika lub butelki.

Przy przetaczaniu świeżo mrożonego osocza konieczne jest wykonanie badania biologicznego (podobnie jak przy przetaczaniu nośników gazów we krwi). O wystąpieniu ewentualnych reakcji anafilaktycznych, alergicznych i innych decydują pierwsze kilka minut po rozpoczęciu wlewu świeżo mrożonego osocza, kiedy niewielka ilość przetoczonej objętości przedostanie się do krążenia biorcy.

Objętość przetaczanego świeżo mrożonego osocza zależy od wskazań klinicznych. W przypadku krwawień związanych z DIC wskazane jest jednorazowe podanie co najmniej 1000 ml świeżo mrożonego osocza pod kontrolą parametrów hemodynamicznych i ośrodkowego ciśnienia żylnego. Często konieczne jest ponowne podanie tych samych objętości świeżo mrożonego osocza przy dynamicznym monitorowaniu koagulogramu i obrazu klinicznego. W tym stanie podanie niewielkich ilości (300 – 400 ml) osocza jest nieskuteczne.

W przypadku ostrej masywnej utraty krwi (ponad 30% objętości krwi krążącej, u dorosłych - ponad 1500 ml), której towarzyszy rozwój ostrego rozsianego zespołu wykrzepiania wewnątrznaczyniowego, ilość przetoczonego świeżo mrożonego osocza powinna wynosić co najmniej 25 - 30% całkowitej objętości środków transfuzyjnych przepisanych w celu uzupełnienia utraconej krwi, tj. co najmniej 800 - 1000 ml.

W przewlekłym rozsianym zespole wykrzepiania wewnątrznaczyniowego z reguły transfuzję świeżo mrożonego osocza łączy się z przepisywaniem bezpośrednich leków przeciwzakrzepowych i przeciwpłytkowych (konieczny jest monitoring krzepnięcia, który jest kryterium trafności terapii). W tej sytuacji klinicznej objętość jednorazowo przetaczanego świeżo mrożonego osocza wynosi co najmniej 600 ml.

W ciężkich chorobach wątroby, którym towarzyszy gwałtowny spadek poziomu czynników krzepnięcia osocza i rozwój krwawienia lub zagrożenie krwawienia podczas operacji, wskazane jest przetoczenie świeżo mrożonego osocza w ilości 15 ml/kg masy ciała, a następnie po 4 - 8 godzinach, poprzez wielokrotną transfuzję osocza w mniejszej objętości (5 - 10 ml/kg).

Bezpośrednio przed transfuzją świeżo mrożone osocze rozmraża się w łaźni wodnej o temperaturze 37°C. Rozmrożone osocze może zawierać płatki fibryny, nie przeszkadza to jednak w jego stosowaniu ze standardowymi urządzeniami do transfuzji dożylnej z filtrem.

Możliwość długotrwałego przechowywania świeżo mrożonego osocza pozwala na jego pobranie od jednego dawcy w celu realizacji zasady „jeden dawca – jeden biorca”, co pozwala znacznie zmniejszyć obciążenie antygenowe biorcy.

"